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说明书

、 试剂盒介绍

&苍产蝉辫;流行性造血器官坏死病，是由无囊膜胞浆型虹彩病毒科蛙病毒属的流行性造血器官坏死病毒

（EHNV）所引起的鱼类疾病。病鱼因肝脏、脾脏、肾脏造血组织和其他组织坏死而导致死亡。易感动物主要为赤鲈、虹鳟等种类，其中，赤鲈对该病毒极为敏感，幼鱼和成鱼都可受 EHNV 感染。EHNV 属于虹彩病毒科蛙病毒属（除新加坡石斑鱼虹彩病毒之外）病毒，本公司针对蛙病毒属的流行性造血器官坏死病毒( epizootic haematopoietic necrosis virus, EHNV)等病毒的主衣壳蛋白( MCP) 基因序列，开发生产了本试剂盒。应用本试剂盒进行检测具有快速、灵敏、特异、准确 、安全、操作简单、应用广泛等特点及优点。

2、 试剂盒组成

试剂盒组成包括核酸提取试剂和核酸扩增试剂，具体组成参见表 ：

表 ：试剂盒组成（50test/盒）

试剂盒组成成分 体积

核酸提取试剂： 样品 DNA 提取液

样品 DNA 提取液 2 5ml× 管

500µl× 管

核酸扩增试剂： DEPC 水

EHNV 荧光 PCR 反应液

Taq 酶(5U/ul) 阴性对照

EHNV 荧光阳性对照 5ml× 管

750µl× 管

40µl× 管

ml× 管

ml× 管

*保存条件：样品 DNA 提取液 、2 和试剂盒须在-20℃保存。

3、 样本采集，存放及运输

样本采集

采集活的或濒死的鱼的肾或脾等组织，研磨PBS稀释后提取核酸。或将细胞培养分离病毒的有CPE 的细胞悬液提取核酸病毒。

存放

研磨后的样本在 2 ℃—8 ℃条件下保存应不超过 24 h；-70 ℃以下可保存，但应避免反复冻融（多冻融 3 次）。

运输

采用冰或泡沫箱加冰密封进行运输。

4、 检测步骤

DNA 核酸提取操作方法(在样本处理区进行)：

取 n 个 .5ml 灭菌 Eppendorf 管，其中 n 为待检样品数、一管阳性对照和一管阴性对照之和， 对每个管进行编号标记。

每管加入 00 µl DNA 提取液 ，然后分别加入待测样本、阴性对照和阳性对照(阳性对照吸取前充分混匀)各 00µl，一份样本换用一个吸头；混匀器上震荡混匀 5 s,于 4℃～25℃条件下， 2 000 r/min 离心 0 min。

尽可能吸弃上清且不碰沉淀，再加入 0µl DNA 提取液 2，混匀器上震荡混匀 5s,于 4℃～25℃ 条件下，2 000 r/min 离心 0 s。

00℃ 干浴或沸水浴 0 min；加入 90µl DEPC 水，2 000 r/min 离心 0 min，吸取上清， 即为提取的 DNA，冰上保存待用（提取的 DNA 需在 2 h 内进行 PCR 扩增或放置于-70℃冰箱内保存）。

荧光 PCR 检测

扩增试剂准备（在反应混合物配制区进行）：

从试剂盒中取出荧光 PCR 反应液、Taq 酶，2000×g 离心 5 秒钟。每个样品测试反应体系配制见下表 2。

表 2 每个样品测试反应体系配制表

试剂 荧光 PCR 反应液 Taq 酶 合计

用量 4.5 μL 0.5μL 5μL

加样（样本处理区进行）：

向每个PCR 管中各分装5μL 的混合液，再分别加入样本DNA 模板0μL，盖紧管盖，500 r/min

离心 30 s。

荧光 PCR 检测（在检测区进行）： 循环条件设置：

一阶段，94 oC /4 min；

第二阶段，95oC/5 s，60 oC/60 s； 40个循环；在每次循环的60 oC退火延伸时收集荧光。试验检测结束后，根据收集的荧光曲线和Ct值判定结果。

5、 结果判定

结果分析条件设定

直接读取检测结果。阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的高点为准。

质控标准

5.2.阴性对照无颁迟值或无扩增曲线。

5.2.2阳性对照的颁迟值应&濒迟;28.0，并出现典型的扩增曲线。否则，此次实验视为无效。

结果描述及判定

5.3.阴性

无颁迟值或无扩增曲线，示样品中无贰贬狈痴核酸。

5.3.2阳性

颁迟值&濒别;30，且出现典型的扩增曲线，示样品中存在贰贬狈痴核酸。为进一步确诊是贰贬狈痴，建议用普通笔颁搁进行确认或测序。

5.4 有效原则

颁迟&驳迟;30的样本建议重做。重做结果无数值者为阴性，否则为阳性。

6、 相关技术信息

MCP-53F: 5’-TCACCAAGCTGCCGTCTCT-3’ MCP-25R:5’-AAAACTGCTGCCCGAAAGC-3’

MCP-75T: (FAM)5’-CGCCAAGATGTCGGGCAACCC-3’(TAMR